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PPA–植物組織培養抗菌保護劑

PPA–植物組織培養抗菌保護劑

產(chǎn)品編號:PPA001

產(chǎn)品規格:50ml

數量
價(jià)格 ¥800

PPA,Plant Tissue Culture Preservative Agents  

PPA 植物組織培養抗菌保護劑

使用操作說(shuō)明

 

產(chǎn)品名稱(chēng):PPA- Plant Tissue Culture Preservative Agents

(植物組織培養抗菌保護劑)

 

貨號:PPA001-50ml

     

 

保存條件:4℃

 

運輸條件:常溫運輸

 

性狀:無(wú)色至琥珀色透明液體

 

pH 值:3.8

 

有效期:見(jiàn)瓶身標簽說(shuō)明

 

產(chǎn)品描述:

1.    PPA是一種熱穩定的抗菌劑,用于植物組織培養中植物的微生物污染防治與清除;

2.   在合理的使用劑量下,PPA是一種非常有效的植物組培抗菌劑與保護劑,不會(huì )對植物的生長(cháng)(如種子萌發(fā),愈傷增殖、再生等)產(chǎn)生任何影響,可視為培養基標準配方成份;

3.   PPA主要用于預防和消除來(lái)自空氣、水源或者人體接觸等外界因素導致的植物組培過(guò)程中的微生物污染,同時(shí),對于植物內生菌也同樣具有非常好的抑制效果;

4. PPA廣泛適用于絕大多數被子植物和裸子植物,但是不推薦用于蕨類(lèi)植物、藻類(lèi)等水生植物;

5.   PPA具有熱穩定性,能直接加入培養基高溫滅菌而不會(huì )影響使用效果,使用更加方便;

6.    PPA相對于常規抗生素而言,性?xún)r(jià)比更高。

 

作用機理:

PPA的活性成分能滲透細菌或者真菌細胞壁,抑制呼吸作用中三羧酸循環(huán)和電子傳遞鏈過(guò)程中關(guān)鍵酶的活性,同時(shí)也能阻斷細菌和真菌吸收和利用培養基中單糖和氨基酸的過(guò)程,從而實(shí)現預防和清除植物組織培養過(guò)程中的微生物污染。

 

相對抗生素的優(yōu)勢:

1.    PPA能廣泛抑制和清除細菌和真菌的污染,并防止真菌孢子的萌發(fā);

 

2.    PPA是通過(guò)抑制多種酶的活性而達到抑菌效果,從而能避免耐藥突變體的發(fā)生;

3.    PPA具有熱穩定性,無(wú)需過(guò)濾滅菌,能直接加入培養基高溫滅菌而不會(huì )影響使用效

果,使用更加方便;

4.    PPA性?xún)r(jià)比更高,可更加廣泛的應用于更多的科學(xué)研究、作物育種、組培苗工廠(chǎng)化

生產(chǎn)中。

 

以下操作說(shuō)明是針對大多數情況下的常規使用說(shuō)明,必要時(shí),可根據具體植物樣本情況進(jìn)行適當調整。

 

1.    常規用量:

一般推薦使用使用濃度為 0.05%-0.2%(1L 培養基中加入 0.5-2 ml PPA);

愈傷增殖,器官形成,胚性組織發(fā)育等使用濃度為 0.05%-0.075%(1L 培養基中加入 0.5-0.75 ml PPA)。

說(shuō)明:

(a) 含有 PPA的培養基無(wú)需在超凈工作臺中分裝,在培養基凝固以后將培養瓶/皿蓋子蓋好即可。如使用自動(dòng)灌裝系統,建議在灌裝前后將分裝管用高壓滅菌熱水處理;

(b) 如果培養基儲存液保存在無(wú)菌容器中并未經(jīng)污染的情況下,加入 PPA配制的培養基無(wú)需再次過(guò)濾或者高溫滅菌。如果是營(yíng)養培養基,如含有 200 mg/L 甚至更高濃度氨基酸或者蛋白質(zhì)的培養基,建議過(guò)濾滅菌。

2.    植物內生菌污染處理:

(a) 種子:PPA不推薦用于直接處理含有大量的細菌或真菌孢子的種子滅菌,對于種子離體萌發(fā),建議先采用傳統方法消毒,然后置于含 2-3% PPA的全培養基礎鹽溶液中,輕輕攪拌 4-12 小時(shí),此過(guò)程千萬(wàn)不能添加 Tween20 和調節 pH,處理完成以后直接插入含有 PPA (草本植物 0.05-0.1%,木本植物 0.2%)的培養基里;

(b) 外植體:以 1cm 外植體為例,將外植體置于含 4-5% PPA的全培養基礎鹽溶液中,輕輕攪拌 4-12 小時(shí),此過(guò)程千萬(wàn)不能添加 Tween20 和調節 pH,處理完成以后直接插入含有 PPA (草本植物 0.05-0.1%,木本植物 0.2%)的培養基里;

(c) 對于塊莖,球莖和鱗狀物的觀(guān)賞植物樣本:將其整體放入傳統消毒劑中攪拌消毒處理以后,用水沖洗干凈,將材料切成薄片,置于含 4-5% PPA的全培養基礎鹽培養液中,輕輕攪拌 4-12 小時(shí),此過(guò)程千萬(wàn)不能添加 Tween20 和調節 pH,處理完成以后無(wú)需沖洗直接插入含有 0.1-0.2%的 PPA的培養基里進(jìn)行培養。

3.   如果厚的外植體、污染嚴重的植株、種子等樣本經(jīng)過(guò)以上處理仍得不到理想效果,可嘗試以下操作:

(a) 將材料浸泡在水中持續攪拌處理(松軟組織攪拌 1 小時(shí),硬實(shí)組織攪拌 2 小時(shí));

(b) 將材料在含 50%的 PPA全培養基礎鹽溶液中攪拌處理 5-10 分鐘,此過(guò)程千萬(wàn)不能添加 Tween20 和調節 pH;

(c) 無(wú)需沖洗,將處理過(guò)的材料直接加入到培養基中即可。對于真菌污染,可在培養基中加入適當濃度的 PPA。對于真菌細菌混合性污染,建議在培養的第一個(gè)月的培養基中加入 0.05%-0.2%的 PPA。


4.    嚴重污染材料污染去除與搶救(重污染不超過(guò)一周):

(a) 將污染的材料至于流水中用軟刷刷洗,然后置于含 50% PPA的無(wú)菌水溶液中攪拌

5-15 分鐘,對于細菌或者混合性污染,建議使用 100% PPA與 0.6 g/L 的檸檬酸無(wú)菌水溶液按 1:1 混合的低 pH(2.8-3.2)的酸性溶液處理;

(b) 處理后的材料無(wú)需清洗,直接插入含 0.05%-0.25 的 PPA的培養基中培養至少一個(gè)月以上,其中前 10 天需要弱光培養;對于一些真菌、孢子和細菌污染隱藏較深,PPA無(wú)法接觸到的部位,建議在初步的清洗以后,將材料切開(kāi),然后再放入含 50% PPA的無(wú)菌水溶液中攪拌 5-15 分鐘處理。

5.    農桿菌的去除:

共培養以后,將樣本用無(wú)菌水清洗,然后將樣本浸沒(méi)在 100% PPA(補充 4X 的培養基鹽溶液)中處理 2 分鐘,取出后用無(wú)菌紙吸干后并置于常用抗性培養基中培養,3 周后,更換到只含有 0.05%-0.075% PPA (無(wú)常用抗生素)的培養基中培養。

 

使用注意事項:

1. 在所有 PPA消毒處理外植體的過(guò)程中,盡量保證容器的體積足夠大,并使外植體材料所有面積與含 PPA 的處理溶液充分接觸,以保證消毒效果;

2. 如果外植體出現高度氧化現象,不要扔棄,大約 50%的外植體在 4-6 周內即可恢復;

3. 50% PPA的處理溶液可以重復使用但是不推薦,因為使用次數和效果受外植體的體積與接種密度的影響。將 50% PPA的處理溶液保存在 4oC可適當延長(cháng)其活性。

4. 如果 50% PPA溶液處理效果不理想,可采用 100% PPA溶液進(jìn)行處理,處理方法相同,但使用次數不得超過(guò) 10 次。

 

安全說(shuō)明:

 

1. 雖然 PPA是無(wú)毒性的,但是在使用過(guò)程中還需盡量避免直接與人體皮膚等直接接觸,建議使用時(shí)佩戴手套,保持空間空氣流通,如不慎吸入,先馬上因大量純凈水后立即就醫,如不慎入眼,立刻用大量水沖洗眼睛 15 分鐘,用肥皂清洗 PPA接觸過(guò)的皮膚部位;

2.  含 PPA的培養基垃圾處理與常規培養基處理方法相同。

 


使用發(fā)表文章:

1. Miyazaki J, Tan BH, Errington SG.   Eradication of endophytic bacteria via treatment for axillary buds  of Petunia hybrida using Plant Preservative Mixture (PPA). PCTOC. 2010;102(3):365-372.

2. Miyazaki J, Tan BH, Errington SG, Kuo JS. Bacterial endophyte in Macropidia fuliginosa: its localisation and eradication from in vitro cultured basal-stem callus. Aust J Bot. 2011;59(4):363-368.

3. Lata H, Chandra S, Khan IA, ElSohly MA. Propagation through alginate encapsulation of axillary buds  of Cannabis sativa L. - an important medicinal plant.   Phys and Mol Biol of Plants. 2009;15(1):79-86.

4. Greer SP, Rinehart TA.   Dormancy and Germination In Vitro Response of Hydrangea macrophylla and Hydrangea paniculata Seed to Light, Cold-Treatment and Gibberellic Acid. J. Environ. Hort.2010;28(1):41–47.

5. Moghaddam S, et al. Optimization of an Efficient Semi-Solid Culture Protocol for Sterilization and Plant Regeneration of Centella asiatica (L.) as a Medicinal Herb. Molecules. 2011;16(11): 8981-8991

 


 
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